Optimierung eines für Chenopodium quinoe und Beta vulgaris geeigneten viralen Expressionssystems
Final Report Abstract
Für pflanzenvirale Expressionsvektoren gibt es die verschiedensten Anwendungsmöglichkeiten. Besonders interessant ist die Produktion von wirtschaftlich wichtigen Proteinen wie Impfstoffen, Antikörpern, Enzymen, (die gegebenenfalls durch Veränderungen in ihren kodierenden Sequenzen für bestimmte Anwendungen optimiert werden können), anti-Tumor-Agentien etc. in Pflanzen. Über das virus-inducedgenesilencing (VIGS) ermöglichen pflanzenvirale Expressionsvektoren weiterhin eine Funktionsanalyse von Pflanzen-Genen. Schließlich scheinen Vorhersagen über die Hemmbarkeit von Virusinfektionen durch Expression viraler Genombereiche durch derartige virale Vektoren möglich (Culver, 1996; Bleykasten-Grosshans et al., 1997; Dolja et al., 1997). Die meisten pflanzenviralen Vektoren sind vor allem für Solanaceaen, insbes. Nicotiana benthamina, geeignet. Unser Bestreben war es, ein virales Expressionssystem für die bei Pflanzenvirologen besonders beliebte Testpflanze Chenopodium quinoa und für Zuckerrüben zu entwickeln. Mit einem solchen System sollte der Einfluss exprimierter Nukleinsäuresequenzen auf Replikation und Translokation des Rhizomaniavirus (Beet necrotic yellow vein virus, BNYW) und des Soil-borne cereal moaic virus (SBCMV) getestet werden. Als Grundlage für ein zu entwickelndes Vektorsystem schienen die verschiedenen, ursprünglich als Stämme bezeichneten Isolate des zur Gattung Potexvirus gehörenden Cactus virus X besonders geeignet. Die Sequenzierung ihrer genomischen RNAs ergab - wie früher schon serologische Untersuchungen - , dass die aus Zygocactus sp.; Schlumbergera sp. und Opuntia sp. stammenden Isolate nur relativ entfernt verwandt sind. Sie werden daher auf unseren Vorschlag vom ICTV jetzt als drei eigenständige Viren, nämlich Zygocactus virus X (ZVX), Schlumbergera virus X (SVX) und Opuntia virus X (OVX) geführt. Mit einem auf dem ZVX basierenden Vektor ist es uns gelungen, das BNYW- und das SBCMV-Hüllprotein in C. quinoa, Tetragonia expansa und Zuckerrüben zu exprimieren. Dabei konnten wir erstmalig nachweisen, dass das BNYW-Hüllprotein alleine - auch ohne sein Durchleseprotein - zu BNYW-ähnlichen Partikeln aggregieren kann. Leider führten die auf dem ZVX oder dem SVX basierenden Konstrukte - im Gegensatz zu den Wild-Typ Isolaten - nur in seltenen Fällen zu systemischen Infektionen. Unser Endziel, nämlich die Entwicklung eines Systems zur Testung des Einflusses von exprimierten Nukleinsequenzen auf die Replikation und Translokation des BNYW und des SBCMV, konnten wir daher nicht erreichen. Um die von uns entwickelten Konstrukte auch für weitere Anwendungen nutzbar zu machen, haben wir Kontakt mit Prof. Y. Gleba (Icon-Genetics, Biozentrum Halle) aufgenommen. Prot Gleba und seine Mitarbeiter konnten mit einer von ihnen entwickelten 'deconstructed virus' Strategie eine 10hoch7 fache Steigerung der Effizienz eines auf einem Tobamovirus basierenden Konstruktes erzielen. Dabei wurde die Funktion der systemischen Ausbreitung durch eine besonders effiziente Form der Agroinfektion (Magnifection) ersetzt und die der Hüllprotein- Bildung; die den Syntheseapparat der Pflanze unnötig belastet, eliminiert. Die Einführung von Introns und die Eliminierung von kryptischen splicing sites trugen weiterhin zur Verbesserung der Konstrukte bei. Prof. Gleba hat sich bereit erklärt, Forschungsarbeiten zur Optimierung unserer Konstrukte durchzuführen, wobei eventuell erzielte Ergebnisse veröffentlicht werden sollen. Über die DMSZ stehen die Konstrukte auch anderen interessierten Kollegen zur Verfügung.
Publications
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