Motorisiertes Fluoreszenz-Mikroskop-System
Zusammenfassung der Projektergebnisse
Das Motorisierte Fluoreszenz-Mikroskop-System konnte sehr erfolgreich innerhalb verschiedener Projekte der Forschungsschwerpunkte meiner Arbeitsgruppe Einsatz finden. Die vier Haupt-Forschungsschwerpunkte meiner Gruppe an der MFT sind: I) Design bio-inspirierter, biokompatibler Materialien; II) Entwicklung und Etablierung humaner stammzellbasierter In vitro Gewebekultursysteme; III) Etablierung humaner disease-in-a-dish Modelle, sowie IV) Laserbasierte Optische Technologien für die Regenerative Medizin. Das System fand vor allem Haupteinsatz innerhalb der ersten 3 Jahre innerhalb von Forschungsarbeiten im Bereich der histologischen, histochemischen und immuncyto- sowie immunhistochemischen Untersuchungen von Primär- und Stammzellkulturen, sowie dreidimensionaler Gewebekulturen. Das System ermöglichte auch die Etablierung einer neuen Anwendung der Polarisationsmikroskopie zur Analyse von kollagenen Fasern. Diese erlaubt nun einen tieferen Einblick in die Physiologie und Pathologie des extrazellulären Matrix-Remodellings innerhalb von Geweben. Auch im Bereich der humanen Entwicklungsbiologie konnten viele Fragestellungen mittels des Systems beantwortet werden. Erste Live-Zell-Experimente konnten durchgeführt werden. Hier lag der Schwerpunkt auf der Entwicklung neuer Bioreaktorsysteme, welche eine online Zell-Analyse in der laufenden Zell- und Gewebekultur erlauben. Das Gerät wird darüber hinaus auch von anderen Arbeitsgruppen an der medizinischen Fakultät der Universität Tübingen vornehmlich zur Routine-Analyse von histologisch, histochemisch und immuncyto/histochemisch angefärbten Zellkulturen und Gewebeschnitten genutzt.
Projektbezogene Publikationen (Auswahl)
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In vitro elastogenesis – Instructing human vascular smooth muscle cells to generate an elastic fiber-containing extracellular matrix scaffold. . Biomed Mater 10(3): 034102 (2015)
Hinderer S, Shen N, Ringuette LJ, Hansmann J, Reinhardt DP, Brucker SY, Davis EC, Schenke-Layland K
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Modulation of inflammation and angiogenesis and changes in ECM GAG-activity via dual delivery of nucleic acids. Biomaterials 69: 133-147 (2015)
Browne S, Monaghan MG, Brauchle E, Carvajal Berrio D, Chantepie- Laborde S, Papy-Garcia D, Schenke-Layland K, Pandit A
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Endocardial-to-mesenchymal transformation and mesenchymal cell colonization at the onset of human cardiac valve development. Development 143(3): 473-482 (2016)
Monaghan MG, Linneweh M, Liebscher S, Van Handel B, Layland SL, Schenke-Layland K
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Visualizing tropoelastin in a long-term human elastic fibre cell culture model. Sci Rep 6: 20378 (2016)
Halm M, Schenke-Layland K, Jaspers S, Wenck H, Fischer F
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Applying phasor approach analysis of multiphoton FLIM measurements to probe the metabolic activity of three-dimensional in vitro cell culture models. Sci Rep 7: 42730 (2017)
Lakner PH, Monaghan M, Möller Y, Olayioye M, Schenke-Layland K
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Electrospun poly-l-lactide scaffold for the controlled and targeted delivery of a synthetically obtained Diclofenac prodrug to treat actinic keratosis. Acta Biomater 52: 187-196 (2017)
Piccirillo G, Bochicchio B, Pepe A, Schenke-Layland K, Hinderer S
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Raman microspectroscopy as diagnostic tool for the non-invasive analysis of fibrillin-1 deficiency in skin and in in vivo skin models. Acta Biomater 52: 41-48 (2017)
Brauchle E, Bauer H, Fernes P, Zuk A, Schenke-Layland K, Sengle G
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Steps towards maturation of embryonic stem cell-derived cardiomyocytes by defined physical signals. Stem Cell Reports 9(1): 122-135 (2017)
Shen N, Knopf A, Westendorf C, Kraushaar U, Riedl J, Bauer H, Pöschel S, Layland SL, Monika Holeiter M, Knolle S, Brauchle E, Nsair A, Hinderer S, Schenke-Layland K
