Detailseite
Projekt Druckansicht

Oxidation von Protein-Tyrosinphosphatasen in der onkogenen Zelltransformation

Fachliche Zuordnung Zellbiologie
Förderung Förderung von 2013 bis 2019
Projektkennung Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) - Projektnummer 230484278
 
Erstellungsjahr 2019

Zusammenfassung der Projektergebnisse

Protein-Tyrosinphosphatasen (PTP) sind enzymatische Gegenspieler von Protein-Tyrosinkinasen (PTK). Die Aktivität von PTP und wahrscheinlich auch von einigen PTK wird durch reaktive Sauerstoff-Spezies (ROS) reguliert. Biochemische Grundlage dafür ist die reversible Oxidation von Cystein-Resten in den betreffenden Enzymen. Bei PTP ist dies vor allem ein Cystein-Rest im aktiven Zentrum, dessen Oxidation zur Hemmung führt. Bei PTK ist die regulatorische Rolle von Cysteinen weniger gut charakterisiert. Die Bedeutung von PTP und die ROS-vermittelte Regulation von PTP und PTK in Tumorerkrankungen sind noch wenig verstandene Mechanismen, die grundsätzliche und potentiell auch translationale Bedeutung haben. In zwei Projektabschnitten haben wir diese Prozesse in Zellen der Akuten Myeloischen Leukämie (AML) untersucht, in denen das Onkoprotein FLT3ITD (Fms-like tyrosine kinase with internal tandem duplications) exprimiert war. Bei FLT3ITD handelt es sich um eine konstitutiv aktive Rezeptor-PTK. Mutationen im FLT3 Gen, die zur Expression dieser mutierten Version führen, sind häufig und bedingen eine schlechte Prognose der Leukämie- Erkrankung. Diese Zellen weisen erhöhte Spiegel an ROS auf, die auf noch unvollständig verstandene Weise zur leukämischen Zelltransformation beitragen. Die fehlerhafte Regulation von PTP und PTK durch ROS könnte eine Rolle dabei spielen. Im ersten Projektabschnitt konnten wir teilweise aufklären, warum ROS in FLT3ITD-positiven Zellen vermehrt gebildet werden: Durch FLT3ITD wird in den Leukämiezellen sehr stark STAT5 aktiviert, das an den Promotor für das Gen der NADPH-Oxidase 4 (NOX4) bindet und die Expression des Gens erhöht. Da NOX4 konstitutiv aktiv ist, hat dies eine erhöhte ROS-Produktion zur Folge. Die Verringerung der NOX4 Spiegel mit genetischen Methoden inhibierte das Vermögen der Zellen in vitro und in Mausmodellen in vivo zu wachsen. Dadurch wurde NOX4 als potentiell interessantes Target identifiziert. NOX4 abhängige ROS Produktion führt zur Inaktivierung von PTP, darunter der Transmembran PTP DEP-1/PTPRJ, worüber sich der promovierende Effekt von NOX4 auf die Zelltransformation teilweise erklärt. Im zweiten Projektabschnitt wurde mit SHP1/PTPN6 eine weitere, in Zellen der FLT3ITD-positiven Leukämie hoch exprimierte PTP, auf ihre Relevanz in den Leukämiezellen untersucht. Überraschenderweise hatte die genetische Herabsetzung der SHP1-Spiegel einen abschwächenden Effekt auf die FLT3ITD-abhängige Zelltransformation in vitro und in vivo. Ein dafür relevanter Signalweg beinhaltet STAT6, ein direktes Substrat von SHP1, und Integrin β3, welches durch aktives STAT6 in der Expression erhöht wird. Reduktion der SHP1 Expression, Hemmung von SHP1 mit einem niedermolekularen Wirkstoff, Überexpression von ITGB3, oder die starke Aktivierung der STAT6-ITGB3-Achse mit IL4 hemmten die FLT3ITD-abhängige Zelltransformation. Auch dieser Signalweg könnte translationale Relevanz haben. Wir untersuchten weiterhin, ob die FLT3ITD-getriebene ROS Produktion auch zu einer Regulation der PTK FLT3ITD selbst führen könnte. Die Daten zeigen, dass FLT3ITD in intakten Zellen offenbar an bestimmten zytoplasmatischen Cystein-Resten oxidiert wird. Cystein-zu-Serin-Mutationen an mehreren Positionen bewirkten starke Phänotypen in der FLT3ITD Signaltransduktion und Zelltransformation, was die regulatorische Potenz von Cystein-Modifikationen in diesem Onkoprotein unterstreicht.

Projektbezogene Publikationen (Auswahl)

  • (2016) Non-transmembrane PTPs in Cancer. In: Protein-Tyrosine Phosphatases in Cancer, Neel, BG, Tonks, NK, Editors, Springer, New York, pp. 47-113
    Hendriks, WJAJ, Böhmer, FD
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1007/978-1-4939-3649-6_3)
  • (2016) NOX-driven ROS formation in cell transformation of FLT3-ITD-positive AML. Exp Hematol. 44(12):1113-1122
    Jayavelu AK, Moloney JN, Böhmer FD, Cotter TG
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.exphem.2016.08.008)
  • (2016) NOX4-driven ROS formation mediates PTP inactivation and cell transformation in FLT3ITD-positive AML cells. Leukemia 30(2):473-83
    Jayavelu AK, Müller JP, Bauer R, Böhmer SA, Lässig J, Cerny-Reiterer S, Sperr WR, Valent P, Maurer B, Moriggl R, Schröder K, Shah AM, Fischer M, Scholl S, Barth J, Oellerich T, Berg T, Serve H, Frey S, Fischer T, Heidel FH, Böhmer FD
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/leu.2015.234)
  • (2017) Synergistic killing of FLT3ITD-positive AML cells by combined inhibition of tyrosine-kinase activity and N-glycosylation. Oncotarget 8(16):26613- 26624
    Tsitsipatis D, Jayavelu AK, Müller JP, Bauer R, Schmidt-Arras D, Mahboobi S, Schnöder TM, Heidel F, Böhmer FD
    (Siehe online unter https://doi.org/10.18632/oncotarget.15772)
  • (2017). Nuclear membrane-localised NOX4D generates pro-survival ROS in FLT3-ITD-expressing AML. Oncotarget 8(62):105440-105457
    Moloney JN, Jayavelu AK, Stanicka J, Roche SL, O'Brien RL, Scholl S, Böhmer FD, Cotter TG
    (Siehe online unter https://doi.org/10.18632/oncotarget.22241)
  • (2018) Hyperglycaemia-induced methylglyoxal accumulation potentiates VEGF resistance of diabetic monocytes through the aberrant activation of tyrosine phosphatase SHP-2/SRC kinase signalling axis. Sci Rep. 8(1):14684
    Dorenkamp M, Müller JP, Shanmuganathan KS, Schulten H, Müller N, Löffler I, Müller UA, Wolf G, Böhmer FD, Godfrey R, Waltenberger J
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/s41598-018-33014-9)
  • PTPRG and PTPRC modulate nilotinib response in chronic myeloid leukemia cells. Oncotarget 2018 9(10):9442-9455
    Drube J, Ernst T, Pfirrmann M, Albert BV, Drube S, Reich D, Kresinsky A, Halfter K, Sorio C, Fabisch C, Hochhaus A, Böhmer FD
    (Siehe online unter https://doi.org/10.18632/oncotarget.24253)
  • (2019) Lack of CD45 in FLT3-ITD mice results in a myeloproliferative phenotype, cortical porosity, and ectopic bone formation. Oncogene 38(24):4773-4787
    Kresinsky A, Schnöder TM, Jacobsen ID, Rauner M, Hofbauer LC, Ast V, König R, Hoffmann B, Svensson CM, Figge MT, Hilger I, Heidel FH, Böhmer FD, Müller JP
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/s41388-019-0757-y)
 
 

Zusatzinformationen

Textvergrößerung und Kontrastanpassung